Deze studie toont aan dat de wortelgeassocieerde schimmel Kosakonia oryziphila NP19, geïsoleerd uit rijstwortels, een veelbelovend biopesticide en biochemisch middel is dat de plantengroei bevordert en kan worden ingezet tegen rijstblast. In vitro-experimenten werden uitgevoerd op verse bladeren van Khao Dawk Mali 105 (KDML105) aromatische rijstzaailingen. De resultaten toonden aan dat NP19 de kieming van de conidia van de rijstblastschimmel effectief remde. De schimmelinfectie werd geremd onder drie verschillende behandelingsomstandigheden: inoculatie van rijst met NP19 en schimmelconidia; gelijktijdige inoculatie van bladeren met NP19 en schimmelconidia; en inoculatie van bladeren met schimmelconidia gevolgd door een behandeling met NP19 30 uur later. Bovendien verminderde NP19 de groei van schimmelhyfen met 9,9–53,4%. In potproeven verhoogde NP19 de activiteit van peroxidase (POD) en superoxide dismutase (SOD) met respectievelijk 6,1% tot 63,0% en 3,0% tot 67,7%, wat wijst op verbeterde afweermechanismen van de plant. Vergeleken met niet-geïnfecteerde NP19-controleplanten vertoonden met NP19 geïnfecteerde rijstplanten een toename van het pigmentgehalte met 0,3%–24,7%, het aantal volle korrels per aar met 4,1%, de opbrengst aan volle korrels met 26,3%, de opbrengstmassa-index met 34,4% en het gehalte aan de aromatische verbinding 2-acetyl-1-pyrroline (2AP) met 10,1%. Bij rijstplanten die geïnfecteerd waren met zowel NP19 als rijstblast, waren de toenames respectievelijk 0,2%–49,2%, 4,6%, 9,1%, 54,4% en 7,5%. Veldexperimenten toonden aan dat rijstplanten die gekoloniseerd en/of geïnoculeerd waren met NP19 een toename vertoonden in het aantal volle korrels per aar met 15,1–27,2%, de opbrengst aan volle korrels met 103,6–119,8% en het 2AP-gehalte met 18,0–35,8%. Deze rijstplanten vertoonden ook een hogere SOD-activiteit (6,9–29,5%) in vergelijking met met rijstblast geïnfecteerde rijstplanten die niet met NP19 waren geïnoculeerd. Bladbespuiting met NP19 na infectie vertraagde de progressie van de laesies. K. oryziphila NP19 bleek dus een potentieel plantengroeibevorderend bioagens en biopesticide te zijn voor de bestrijding van rijstblast.
De effectiviteit van fungiciden wordt echter beïnvloed door vele factoren, waaronder de samenstelling, het tijdstip en de wijze van toepassing, de ernst van de ziekte, de effectiviteit van ziektevoorspellingssystemen en het ontstaan van resistentie tegen fungiciden. Bovendien kan het gebruik van chemische fungiciden residuele toxiciteit in het milieu veroorzaken en een gezondheidsrisico voor gebruikers vormen.
In het potexperiment werden rijstzaden aan het oppervlak gesteriliseerd en ontkiemd zoals hierboven beschreven. Vervolgens werden ze geënt met K. oryziphila NP19 en overgeplant in zaaitrays. De zaailingen werden 30 dagen geïncubeerd om ze te laten ontkiemen. Daarna werden de zaailingen overgeplant in potten. Tijdens het overplanten werden de rijstplanten bemest om ze voor te bereiden op infectie met de schimmel die rijstblast veroorzaakt en om hun resistentie te testen.
In een veldexperiment werden gekiemde zaden die geïnfecteerd waren met Aspergillus oryzae NP19 behandeld volgens de hierboven beschreven methode en verdeeld in twee groepen: zaden geïnfecteerd met Aspergillus oryzae NP19 (RS) en niet-geïnfecteerde zaden (US). De gekiemde zaden werden in trays met gesteriliseerde grond (een mengsel van grond, verbrande rijstkaf en mest in een verhouding van 7:2:1 naar gewicht) geplant en gedurende 30 dagen geïncubeerd.
Een suspensie van K. oryziphila-conidiën werd toegevoegd aan R-rijst en na 30 uur incubatie werd 2 μl K. oryziphila NP19 op dezelfde locatie toegevoegd. Alle petrischalen werden 30 uur bij 25 °C in het donker geïncubeerd en vervolgens onder continue belichting geïncubeerd. Elke groep werd driemaal herhaald. Na 72 uur incubatie werden plantendelen onderzocht met behulp van scanningelektronenmicroscopie. Kort gezegd werden de plantendelen gefixeerd in fosfaatgebufferde zoutoplossing met 2,5% (v/v) glutaraldehyde en gedehydrateerd in een reeks ethanoloplossingen. De monsters werden kritisch-puntgedroogd met koolstofdioxide, vervolgens verguld en gedurende 15 minuten onder een scanningelektronenmicroscoop bekeken.
Geplaatst op: 13 oktober 2025